Wednesday, November 29, 2006




STAGO STA® Compact

El analizador para coagulación totalmente automatizado STA® Compact ha sido desarrollado basándose en:
El STA Compact® y la línea STA® de reactivos codificados por códigos de barras, desarrollados como un Sistema Integral para asegurar resultados fiables. Con su sistema de Detección Basado en la Viscosidad, el STA Compact® ofrece una elevada sensibilidad para todos los tests de coagulación y total eficiencia para todos los tipos de plasma.
El STA Compact® realiza simultáneamente ensayos de coagulación, cromogénicos e inmunológicos de acceso aleatorio. Ofrece operaciones flexibles: carga contínua de muestras, producción de estadísticas en tiempo rápido, nueva ejecución y adición de tests en cualquier momento. Configuración de tests fácilmente programables por el usuario.

BENEFICIOS


-PEQUEÑO, SIN LIMITACIONES.
-Resultados rápidos. PT, PTT y Fibrinógeno en menos de 7 minutos.
-Hasta 120 resultados por hora.
-Capacidad walk-away para 1000 cubetas, 45 posiciones de enfriado para reactivos y 96 posiciones para muestras en carga.
-Más de 30 reactivos codificados.
-Capacidad de realizar cualquier prueba especializada.

SIMPLE, PERO INTELIGENTE:

-Carga rápida mediante identificación de código de barras de muestras y reactivos. Cómodo y sin riesgo de error humano o fallo.
-Flujo de trabajo optimizado. Carga de muestras y reactivos en cualquier momento y posición. -Reconoce automáticamente donde ha sido colocada la muestra y el reactivo. Un LED próximo a la muestra indica cuando ha terminado el análisis y se puede sacar el tubo del sistema.
-Todos los datos de calibradores y controles son registrados por códigos de barras, rápidos y seguros.
-Control de calidad automático con un intervalo de control definido por el usuario.

DESCRIPCION DEL SISTEMA






MANEJO DE LA MUESTRA
· 96 posiciones de muestra
· Identificación positiva de las muestras mediante código de barras
· Carga aleatoria
· Perforado de tapones*
· Válido para todos los tamaños de tubos, incluyendo pediátricos y micro contenedores.
SOFTWARE INTEGRADO
Flexibilidad para reiniciar o añadir test en cualquier momento
Consulta en host e interface bidireccional
Programa de control de calidad integrado
Mantenimiento mediante software
Hasta 80 tests programables
MANEJO DE LOS REACTIVOS.
45 posiciones para reactivos refrigeradas a +15° C
Identificación positiva de reactivos mediante código de barras
Carga aleatoria
Capacidad multivial para un mismo reactivo
SISTEMA DE MEDIDA y DETECCION
Ensayos simultáneos de coagulación, cromogénicos e inmunológicos
Sistema de detección basado en la viscosidad para tests de coagulación
3 agujas para muestreo con Detección del nivel de líquido
Diluciones y rediluciones automáticas
CONSUMIBLES
Bobina de 1000 cubetas unitarias
Identificación mediante código de barras
Manejo de consumibles mediante software
LINEA DEDICADA A REACTIVOS.
Reactivos de rutina y especializados precalibrados mediante código de barras (PT, Fibrinógeno, D-Dímero y PS libre)
Manejo completo de los reactivos (nombre, número de lote, volumen, estabilidad y fecha de caducidad)
Amplio meANALISADOR AUTOMÁTICO XXL-STA COMPACT

METODOLOGIA INSTRUMENTAL :


I) INGRESO DE REACTIVO

1. Abrir el cajón numero 2
2. Ingresar los reactivos por código de barra.

¤ REACTIVOS UTILIZADOS:
■ TP (Neoplastine plus): Evalúa la vía extrínseca (VII) y la vía común (X, V, II, I).
■ TTP: evalúa la vía Intrínseca (XII; XI; IX; VIII) y la vía común (X; V; II; I).
■ Fibrinógeno.
■ Factor VIII y otros factores.
■ Anticoagulante lúpico.


II) INGRESO DE LA MUESTRA

1. Abrir el cajón 1.
2. Introducir el ID de la muestra, seleccionar el análisis que pide.
3. Confirmar.

CONTROL DE CALIDAD

Debe realizarse:

1. Antes de empezar el funcionamiento.
2. Al menos 12 horas durante el funcionamiento.
3. Después de operaciones de mantenimiento.
4. Siempre que exista cualquier duda sobre la exactitud de los valores de análisis.


I) MATERIAL DE CONTROL
Control:
- Plasma Nivel normal
- Plasma Nivel patológico

II) MÉTODOS DE CONTROL

- Control Levy – Jennings

III) CALIBRACIÓN
- Se realiza cada véz que se cambia de kit de reactivos
- Cuando los controles no estan dentro del rango adecuado.

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Monday, November 27, 2006


ANALIZADOR HEMATOLOGICO XT:1800i.



El siguiente analizador hematólogico Sysmex, esta en opreaciones desde Diciembre/2006, en el H2Mayo de Lima.




Es un analizador de alta performance que proporciona resultados exactos y precisos, incluyendo un diferencial completamente automatizado, de 5 componentes de glóbulos blancos. Posee gran sensibilidad para separar poblaciones celulares normales de anormales, además de proporcionar linearidad extendida para glóbulos blancos, plaquetas y glóbulos rojos.
ESPECIFICACIONES: Parámetros:
WBC, RBC, HGB, HCT, MCV, MCH, MCHC, PLT, NEUT%, LYMPH%, MONO%, EO%, BASO%, NEUT#, LYMPH#, MONO#, EO#, BASO#, RDW-SD, RDW-CV, PDW*, MPV, PCT*, P-LCR*.
En algunos paises, estos parametros (*), no son reportados. Parámetros de investigación: IG%, IG#
FUNDAMENTO:
CITOMETRIA DE FLUJO: Se realiza , empleando láser semiconductor. Los GB y el GB-5 DIF, es derivado de la medida de la difracción de luz láser, completado con mediciones de RNA-DNA celular, por fluorescencia. La muestra de sangre se aspira, se diluye en la proporción especificada y se introduce en la celda de flujo. El mecanismo de flujo envolvente mejora la precisión y reproducibilidad del recuento celular. Al pasar los eritrocitos -en linea- por el centro de la celda de flujo, se evitan pulsos sanguineos anómalos y contaminación de la celda. PRINCIPIO: Un rayo de luz láser de una sola frecuencia (color), es dirigida sobre una corriente de liquido focalizada hidrodinámicamente. La luz dispersada hacia delante, es recibida por un fotodiodo (Scatter delantero or FSC), la luz dispersada hacia los costados (Scatter laterales :SSC) y otros laterales (fluorescencia), son recibidas por tubos fotomultiplicadores, convirtiéndolas en impulsos eléctricos, que proporcionan información celular. Cada particula suspendida al pasar a través de los rayos esparcidos de luz, excita quimicos fluorescentes, emitiendo luz a una frecuencia mas baja que la luz original. La combinación de scatters y luz fluorescente es captada por detectores, que tras analizar las fluctuaciones de brillantéz, en cada detector (uno para cada pico de emisión fluorescente), extrapola varios tipos de información en relacion a la estructura fisica y quimica de cada particula individual. El FSC se correlaciona con el volumen celular y el SSC con la complejidad interna celular (forma nuclear, cantidad y tipo de gránulos citoplásmicos
, grosor de la membrana).
Los modernos citometros de flujo son capaces de analizar miles de particulas por segundo -en tiempo real- separando y aislando activamente particulas con propiedades especificas. Un citómetro de flujo es similar a un microscopio. Reemplaza las imágenes por un amplio panorama del interior celular, las mismas que son cuantificadas y diferenciadas automáticamente a un set de parámetros.
DETECCIÓN POR DC (Enfoque hidrodinámico: RBC, PLT). En la parte interna del detector, la muestra –alineada centralmente- es colocada delante de la abertura de una celda cónica. Después de introducir a presión la muestra diluida, la muestra queda rodeada por el reactivo envolvente frontal, pasando por el centro de la abertura, detectándose las células con precisión. Tras salir de la celda, la muestra diluida es enviada al tubo de recogida.

METODO :SLS-HEMOGLOBINA (HGB). Método de laurilsulfato sódico (SLS), para Hb. Consta de 2 métodos : el de la cianometahemoglobina y el de la oxihemoglobina. Al igual que en el método de la oxihemoglobina, la velocidad de conversión de la Hb, con el método SLS-hemoglobina es rápido y no usa sustancias tóxicas, lo que lo hace adecuado para procesos automatizados. Si puede emplearse para medir cianohemoglobina, también podrá medir con precisión sangre con metahemoglobina (sangre control). En el método SLS–hemoglobina, se emplean agentes tensioactivos, que lisan la membrana de los eritrocitos, liberandose Hb. El grupo globina de la molécula de Hb, es alterada por el grupo alquilo, hidrófilo del laurilsulfato sódico. Esto promueve la conversión de la Hb en estado ferroso (Fe +2), al estado férrico (Fe +3), formándose MetaHb, que al combinarse con el laurilsulfato-sódico, termina por convertirse en una molécula de hemicromo SLS-Hb. OTROS: Alarmas semicuantitativas: Sysmex Q-Flags, que facilitan la validación. Sistemas ACAS y Cluster Adaptativo : para incrementar la especifcidad de lãs mediciones. Sélectividad -c-à-d :Posibilidad de définir el perfil del analisis para cada muestra. Limites lineares ensanchados. Soluciones informáticas orientadas hacia el futuro : un concepto de integración modular, con una gran flexibilidad y evolución del sistema (SIS).
CAPACIDAD: Hasta 80 muestras por hora. Mayor capacidad conectando 2 unidades.Se necesita sofware TCM, opcional.
MODO DISCRETO: CBC+DIFF
VOLUMEN DE MUESTRA: Manual: 85 uL Muestra: 150 uL Cerrado: 150 uL Capillar: 40 uL.
DATOS ALMACENADOS: Hasta 10,000 resultados, para datos de analisis (+ scattergrams e histogramas). Hasta 5,000 pacientes para informacion. Hasta 1,000 ordenes para informar tests.
CONTROL DE CALIDAD: 21 archivos QC (c/u con 300 datos puntuales)QC:Online
DIMENSIONES (WxDxH, mm): Aprox.
UNIDAD PRINCIPAL: 560 x 630 x 500.

UNIDAD DE MUESTRAS: 520 x 110 x 220.

UNIDAD NEUMATICA : 280 x 400 x 355
PESO (kg): Aprox. Unidad Principal : 52. Unidad de muestras: 7. Unidad Neumática: 17 .
OPCIONES (software): XT-TCM y XT-Pro.
MEZCLADOR (Max. 50 muestras) *Manual perforación de tapas. Lector código de barras.Impresora gráfica. Impresora Láser. Impresora de tickets.Código de barras de mano*Hallazgos estandarizados, en algunas areas.


PROCEDIMIENTOS DE MODO DE ANÁLISIS

I) MODO MANUAL
1. Introducir el ID de la muestra, seleccionando modo manual y ajustar el perfil.
2. Mezclar la muestra por inversión suave mínimo 10 veces.
3. Abrir la tapa e introducir la aguja en tubo hasta la mitad del tubo.
4. Presionar el interruptor de inicio (color verde).
5. Retirar la muestra al escuchar el sonido del equipo.

II) MODO AUTOMÁTICO

1. Colocar las muestras en el rack.
2. Colocar el rack en el muestreador.
3. Introducir el ID de la muestra, seleccionando modo automático y ajustar el perfil.
4. Dar inicio al proceso.

CONTROL DE CALIDAD

Debe realizarse un control de calidad:

1. Antes de empezar el funcionamiento.
2. Al menos 8 horas durante el funcionamiento.
3. Después de rellenar reactivos.
4. Después de operaciones de mantenimiento.
5. Siempre que exista cualquier duda sobre la exactitud de los valores de análisis.

MATERIAL DE CONTROL:


Utilizamos controles:


§ e- CHECK NIVEL BAJO
§ e- CHECK NIVEL NORMAL
§ e- CHECK NIVEL ALTO

MÉTODOS DE CONTROL:

1) Control Levy–Jennings :A-B-C
2) X bar –M

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Saturday, November 18, 2006

SYSMEX CORPORATION. HISTORIA de los ANALIZADORES HEMATOLOGICOS

La Corporación Sysmex es una compañia que fabrica analizadores automatizados de laboratorio, con sede principal en Kobe, Japón. Originalmente se llamo TOA Medical Electronics. La rama Sysmex se inició en 1961 y desde 1978, se dedicó a fabricar principalmente analizadores hematológicos. Fué establecida como Sysmex Corporation, en 1998. En 1963, Sysmex fabricó el primer contador de glóbulos rojos introducido en el mercado como: CC-1001. Con esto, se inició una exitosa carrera en la fabricación de analizadores hematológicos automatizados de la mas alta calidad. Uno de los fundamentos básicos iniciales del funcionamiento de los analizadores Sysmex, fué el Principio Coulter , que establece que particulas que ingresan a un orificio conjuntamente con corriente electrica continua (DC), producen un cambio en la impedancia (resistencia), que es proporcional al tamaño de la particula que atraviesa el orificio. Wallace H. Coulter, diseñó el primer contador Coulter, tras contar exitosamente el número de particulas de plankton marino. La salinidad promedio de la sangre es muy cercana a la del agua marina. De mezclas de NaCl y agua (con la misma salinidad que el agua marina), se dice que son isotónicas con sangre total. Cuando la sangre humana anticoagulada es diluida con solución salina isotónica, el principo Coulter es aplicado, contandose y midiendose el tamaño celular. El primer aparato comercial fué lanzado en 1954 (Coulter Counter Model A).

GENERACION I) Van desde pequeños analizadores de celulas sanguineas : F-520 y F-820, hasta dispositivos completamente automatizados de diferentes complejidades. Las series K, KX-21 and K-4500, además de los parametros standards ofrecen un diferencial de 3 partes de cuentas de leucocitos, basado en la detección de corriente directa (DC). El KX-21 ocupa espacio minimo mientras que el K-4500, aunque ligeramente mas grande ofrece perspectivas adicionales con una automuestra para 50 tubos.
GENERACION II) Series completamente automatizadas (SE-Series), con los modelos SE-9000 y SE-9500 tienen diferenciales de leucocitos de 5 partes, trabajando de modo bidireccional y selectivo, aceptando órdenes para diferentes perfiles de parámetros. El pequeño : SF-3000 esta basado en tecnologia de diodos de laser. Con el ultimo XE-2100, Sysmex pone nuevos standares en los examenes hematológicos. 7 diferentes perfiles pueden ser analizados incluyendo reticulocites, granulocitos inmaduros y glóbulos rojos nucleados.

GENERACION III) Incluye tecnología para contar reticulocitos con citometria de flujo y laser de argon. Establecidos en 1988, los analizadores de reticulocitos representados por la serie R (los ultimos modelos son el R-3500 y el modulo de analisis de reticulocitos [RAM-1] para la serie SE. Son considerados los standares de oro para el contaje y determinación de la pequeña fracción de reticulocitos. Ademas el R-500, usa tecnologia de diodos de laser que complementan al SF-3000 prorcionando una soluccion modular completa para laboratorios pequeños y medianos..

GENERACION IV) Sysmex ofrece el automatico :slide maker/stainer SP-100 y el
CellaVision™ DM96 (Morfologia Digital Celular automatizada). The CellaVision™ DM96, es un sistema informático de morfologia celular automatizada digital para la localizacion, preclasificación, exhibición, almacenamiento y trasmisión de globulos rojos y blancos. Hasta 96 frotices de sangre periférica teñidas pueden ser localizadas de una vez y procesadas a velocidades de entre 30–60/p/hora. Usando una red artificial neural, los globulos blancos pueden ser preclasificados. Asimismo, la morfologia de los globulos rojos es precaracterizada, agrupada y almacenada hasta que el tecnólogo la confirme. La revisión puede ser realizada remotamente desde cualquier PC, empleando el Remote Review Software. Las imágenes pueden ser almacenadas en un CD-ROM o LAN.

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Friday, November 17, 2006



ANALIZADOR HEMATOLOGICO AUTOMATIZADO SYSMEX : KX-21N. De uso en el Hospital Dos de Mayo/Lima-Perú.

SYSMEX MODELO: KX 21N
-Video:Medición de gl162bulos rojos/plaquetas
-Video/Optica.
-Video/procesamiento de Basófilos/Eosinófilos

-CARACTERISTICAS:
-El Sysmex KX-21N, es un analizador hematológico automátizado, con la más avanzada tecnología, capáz de dar resultados precisos y exactos con mínimo mantenimiento, limpio, seguro y de fácil manejo. Integrando todos los componentes del sistema en una sola unidad (incluido el compresor), el KX-21N es un equipo de sobremesa fácil de adaptar a cualquier laboratorio. Almacena en su memoria 300 resultados de pacientes. Su programa de control de calidad registra la media acumulada de pacientes (media de Bull) y gráficas de Levey- Jennings, en 6 archivos. La válvula muestreadora SRV, permite un control más preciso de los volúmenes de aspiración de muestra de sangre total.
-FUNDAMENTO:
-Emplea el Principio Coulter para determinar número y tamaño celular (glóbulos rojos y plaquetas).
-REACTIVOS :
-El reactivo Stromatolyser WH, permite la determinación de leucocitos y hemoglobina en 2 cámaras independientes. El KX-21N, sólo necesita 2 reactivos para determinar 19 parámetros hematológicos. Dispone de un diferencial leucocitario de 3 partes, con histogramas paa plaquetas, GR y GBlancos. Cuenta con encendido (START-UP), completamente automatico, un espacio pequeño y compacto para colocar pequeñas muestras y un botón de apagado para el mantenimiento diario. Cuenta con impresora térmica. Puede ser conectado a un computador e impresora gráfica.

MODO DE OPERACIÓN :

MODALIDAD MANUAL:

*ENCENDIDO DIARIO:
-Encender el equipo presionando el botón : Encendido/apagado
Aspirar los 3 controles (alto, bajo y normal)
Verificar los parámetros de cada control
*APAGADO DIARIO:
-Aspirar la solución de lavado como si fuera una muestra .
-Presionar el botón : encendido/apagado, si se desea seguir analizando muestras

-Parámetros: WBC, RBC, HCT, MCV, MCH, MCHC, PLT, LINF%, MXD%,
NEUT%, LINF#, MXD#, NEUT#, RSW-SD ó RDW.CV, MPV, P-LCR.
-Velocidad: 60 muestras/hora
-Volumen de muestra: 50 microlitros con sangre total y 20 microlitros con sangre
prediluida.
-Memoria: 240 resultados de paciente (s/histogramas).
-Control de calidad: 2 programas: media acumulada, L-J y 6 ficheros de control
de control de calidad.
-Periféricos: pantalla gráfica LCD (115x86 mm), impresora térmica (opcional) , e
interface RS232 (opcional).
-Dimensiones: 480 x 420 x 355 mm.

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Tuesday, November 14, 2006







STart® 4









VIDEO STAGO
PDF
Descripcion:
Es un analizador hemostasico semi automatizado, el cual usa el metodo de deteccion electro mecanica del coagulo (Viscosity-based Detection System). Este metodo elimina interferencia de muestras lipemicas, ictericas o reactivos y muestras opticamente turbias.
Este analizador posee corridas pre programadas con una fuente de curves de calibracion, tambien posee cuatro estaciones de incubacion con cronometros independientes, electronicamente conecatados a una pipeta.

Especificaciones:
· Pipeta conectada electronicamente para mayor exactitude.
· Cuatro estaciones de incubacion con cronometros independientes y senales de audio.
· Tiras de cubetas dividibles.
· Impresora interna.

Pruebas:
· TP
· TTPA
· Fibrinogeno
· Tiempo de Trombina.
· Tiempo de Reptilasa.
· Factor II, V, VII, VIII, IX, X, XI, XII.
· Proteina C y Actividad S.
· TTP – LA

Reactivos:
· STA NEOPLASTINE CI + 5 (ISI ~ 1.3): Determination of Prothrombin Time (PT) by STA© Analyzers (ISI~1.3).Freeze-dried rabbit brain thromboplastin with heparin inhibitor.
· STA CK PREST 5: Determination of Activated Partial Thromboplastin Time (APTT) by STA© Analyzers. Cephalin reagent with kaolin activator.
· STA FIBRINOGEN 5: Quantitative determination of Fibrinogen by STA© Analyzers (Clauss Method). Freeze-dried human thrombin (~100NIH units/mL) with heparin inhibitor and calcium.
· Soluciones y Buffers:
o STA OWREN-KOLLER
o STA CACL2 0.025 M
o STA DESORB U

PROCEDIMIENTO DE RUTINA:
· Correr controles y comprobar con curva de calibracion para iniciar el trabajo.
· Centrifugar todas las muestras por 10 minutos a 2500 rpm
- Procedimiento para TP:
1) Se coloca la cubeta en el posillo de incubacion, con una billa de acero y 50 ul de muestra.
2) Se incuba durante 60 segundos.
3) Luego se translada la cubeta al posillo de lectura.
4) En el posillo de lectura se agregan 100 ul de reactivo para TP (STA NEOPLASTINE CI + 5 ISI ~ 1.3 ) con la pipeta electronicamente conectada para activar el sistema VDS.
5) Se espera a que la billa pare de oscilar de derecha a izquierda.
6) Luego se traduce el resultado al INR, usando el valor ISI q en este caso es de 1.3

- Procedimiento para TTP:
1) Se coloca la cubeta en el posillo de incubacion, con una billa de acero, 50 ul de muestra y 50 ul de reactivo para TTP (STA CK PREST 5).
2) Se incuba durante 180 segundos.
3) Luego se translada la cubeta al posillo de lectura.
4) En el posillo de lectura se agregan 50 ul de Cloruro de Sodio (STA CACL2 0.025 M) con la pipeta electronicamente conectada para activar el sistema VDS.
5) Se espera a que la billa pare de oscilar de derecha a izquierda.
6) Luego se apunta el resultado.

- Procedimiento para Fibrinogeno:
1) Para esta prueba la muestra se tiene que pre tartar con un diluyente (STA OWREN-KOLLER), se usa 180 ul de solucion diluyente y 20 ul de muestra.
2) Se coloca la cubeta en el posillo de incubacion, con una billa de acero, 50 ul de muestra diluida.
3) Se incuba durante 40 segundos.
4) Luego se translada la cubeta al posillo de lectura.
5) En el posillo de lectura se agregan 50 ul de reactivo para fibrinogeno (STA FIBRINOGEN 5) con la pipeta electronicamente conectada para activar el sistema VDS.
6) Se espera a que la billa pare de oscilar de derecha a izquierda.
7) Luego se convierte el resultado con una tabla para convertir a mmg/dl.

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Friday, November 10, 2006




























SYSMEX MODELO: SE 9500

EL SYSMEX SE-9500 . Es un analizador hematológico, completamente automatizado. Consta de 5 sistemas importantes:
Unidad principal.- Contiene los sistemas hidráulico y electrónico (para análisis) y sus componentes del control.
Sampler Unit.- Mezclador, que provee de muestras a la unidad principal.
DMS. Procesos y datos de las exhibiciones obtenidas de la unidad principal.
Unidad Neumática. Provee presión y vacío, requeridos para el análisis.
Unidad de Fuente De Alimentación. Las fuentes accionan a la unidad principal.
-FUNDAMENTOS:
Sysmex SE 9500 + RAM :
-Produce un diferencial rapido de 6 componentes, a partir de datos de 4 canales.
-1. Medida de la resistencia con corriente directa (DC)--> tamaño y densidad
-Medicion de la resistencia con corriente alterna (RF) radio frecuencia--> construccion cellular interna
-2. Re-stand medicion despues de lisado en medio alcalino--> Eosinofilos
-3. Re-stand medicion despues de lisado en medio acido--> Basofilos
-4. Cuenta de reticulocitos por medio de laseres
REACTIVOS:

REACTIVOS, con FUNCION ESTABILIDAD DE CAJA ABIERTA
Cellpack Diluyente para RBC/PLT – HGB: enjuague del instrumento 60 días/20 L
Cellpack 3D(II) :Diluyente y lavado del canal de DIFF 60 días /10 L
Cellsheath Usado en enfoque hidrodinámico en el canal de RBC/PLT 60 días /20 L
Stromatolyser 3D (II) : Reactivo lisante canal del diferencial 60 días ./10 L
Stromatolyser BA :Diluyente y agente lisante usado en el canal de basófilos 60 días /20 L
Stromatolyser EO (II): Diluyente y agente lisante usado en el canal de eosinófilos 60 días/10 L
Stromatolyser-IM :Usado en el canal IMI I, 60 días /10 L
Stromatolyser WL (II) :Diluyente y lisante usado en al canal de WBC y linfocitos 60 días /10 L
Sulfolyser :Lisante de HGB 90 días /5 L.
Manoresh :Detergente usado todos los días en el shutdown 60 días
Ret-search Diluent :Diluyente buffer usado para hacer diluciones para el análisis de reticulocitos 30 días
Ret-search dye Auromine-O :Tinte usado para distinguir los reticulocitos 30 días
Ret- sheath :Usados para el enfoque hidrodinámico para el enfoque durante el análisis en reticulocitos 30 días

MODOS DE OPERACION:
1. Modalidad automática
2. Modalidad manual
3. Modalidad capilar

MANTENIMIENTO
- ENCENDIDO DIARIO
* Encienda el sistema en el siguiente orden: Computadora (DMS) luego la Unidad Principal.
* Introduzca su código de identificación al sistema de la siguiente manera:
1. Seleccione “F1”
2. Entre su número de identificación
3. Entre su palabra clave (Password)
* Presionar la tecla “Home”; seleccione “F7” y la tecla 5.
* Presionar 4; y la tecla “Esc” luego cambiar a “Use”
* Presionar “Enter” y pasar los controles.
* Después de pasar los controles; realizar los tres últimos pasos pero cambiar el “Use” por el “Not use”.
* Presionar la tecla “Home”; seleccione “F5” y la tecla 1
* Seleccione la Fila 1; luego repetir el procedimiento anterior y verificar la fila 2; fila 3, fila 4 y fila 5.

MANTENIMIENTO DIARIO:
SHUTDOWN
• Aspire por la modalidad automática 3 tubos con hipoclorito de sodio (Se recomienda Clorox) y 2 tubos de agua destilada.
• Seleccione “F1” del menú principal.
• Seleccione “N” (shutdown)
• Aspire Clorox a través de la modalidad manual.
• Presione “C” para apagar la alarma
• Cuando aparezca el mensaje “Turn Power Off” apague el equipo: Primero Unidad principal y después DMS (Computadora del sistema).









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Thursday, November 09, 2006

Reporte de caso


Evidencia morfológica de Sarcoma de Kaposi en paciente con VIH y TBC.

Maximiliano Nieva ,Hugo 1 ; Mendoza Contreras, Doris 1

Servicio de hematología, servicio de anatomopatología, servicio de
enfermedades infecciosas del Hospital Nacional Dos de Mayo ,
1 Escuela de medicina ,universidad nacional mayor de San Marcos.
Lima-Perú.



Paciente Homosexual (HSH) con diagnóstico de VIH C3 , Sarcoma de Kaposi (SK) y TBC enteroperitoneal
Key words: HIV , Sarcoma de Kaposi, TBC.

___________________________________


Presentacion del Caso


Varón de 24 años, mestizo, natural y procedente de Lima, soltero, HSH, con infección por VIH y sarcoma de Kaposi .El Paciente fue diagnosticado de infección por VIH presentando como cuadro inicial un síndrome diarreico , siendo su primer recuento de CD4 de 415 / mm3 (tabla n1) y 5 años después presento sarcoma de Kaposi (SK) con tratamiento anti retroviral (targa) y quimioterapia , un año después diagnosticado de tuberculosis enteroperitoneal con tratamiento anti TBC esquema 2

Paciente cursa con un tiempo de enfermedad actual de aproximadamente 15 dias, de aparición insidiosa y curso progresivo. Presento deposiciones liquidas sin mucosidad ni tenesmo 8 a 15 cámaras/día , se asocio nauseas y vómitos de color verde amarillentas , siendo intolerante a la alimentación oral ; al cuadro se asocio debilidad en miembros inferiores con un baja de peso y marcada deshidratación siendo hospitalizado en el servicio de infectología.
Presentaba sed incrementada, apetito disminuido, sueño disminuido , peso disminuido .

Antecedentes

· 2000 diagnostico de infección vih (tabla nº 1) inicia tratamiento 2005
· 2003 diagnóstico Condiloma acuminado tratado .
· 2003 TBC pulmonar tratado 9 meses esquema I
· 2004 diagnóstico por herpes zoster tratado.
· 2005 inicia tratamiento con Aciclovir
· 2005 diagnóstico de molusco contagioso tratado
· 2005 diagnóstico dermatitis psoriasiforme tratado
· 2005 diagnóstico de sarcoma de kaposi 09/2005 inicia quimioterapia
· 2005 gastritis crónica / hiperplasia Linfoidea / Helicobacter pylori tratado
· 2006 TBC enteroperitoneal en tratamiento con esquema II

EXAMEN CLÍNICO

Funciones Vitales :

T:37.4 ºC ;FR: 28rpm;FP:76 lpm; PA:110/70 mmHg;Peso:40 Kg; Talla:1.65 m

Paciente en estado de no gravedad. regular estado general, regular estado de nutrición, mal estado de hidratación.
Examen de Piel y Anexos : Mal hidratada, con lesiones cianóticas en cuello y cara de aspecto puntiforme, tejido celular subcutaneo disminuido, presencia de adenopatía inguinal izquierdo de 2 cm de diámetro de consistencia dura no dolorosa , lesión macular violácea de 3 cm de diámetro en región plantar derecha con presencia de lesiones hiperqueratocicas hiperpigmetadas en el dorso de ambos pies. Examen Regional: normocéfalo, cabello oscuro bien implantado, globos oculares normales, pupilas concéntrica isocóricas, reflejos oculares normales,conjuntivas palpebrales pálidas, sequedad en mucosa oral ; no hay ingurgitación yugular, no hay tirajes, no se palpa la glándula tiroides ni ganglios cervicales .Examen de Tórax y Pulmones: simétrico, respiración costo abdominal, amplexación conservada en ambos hemitorax, sonoridad conservada, murmullos vesiculares pasan adecuadamente, ausencia de sibilantes y roncantes. Examen Cardiovascular: Pulso con frecuencia normal , rítmico, depresibilidad disminuida, simétrico. En región precordial no hay choque de punta. ruidos cardiovasculares disminuidos. Examen del Aparato Digestivo: Abdomen blando , depresibilidad disminuida ,doloroso a la palapacion superficial y profunda, borde hepático a 2 cm. por debajo del reborde costal de bordes romos, no se palpa bazo, sonoro, ruidos hidro aéreos incrementados. Examen Neurológico :LOTEP ,escala de Glasgow 15,pares Craneales sin alteración,la fuerza muscular de ambas piernas (psoas, flexores y extensores de la pierna y del pie) disminuidas con la maniobra de Mingazzini, sensibilidad superficial y profunda conservada,sin presencia de signos meníngeos.

Exámenes Auxiliares
  • Aglutinación en latex para Neumocistis carini : negativo
  • Ig elisa: ractivo
  • Paracitos en heces : isospora belli
  • Rpr : no reactivo
  • Heces seriados : leucocitos >100xc
  • Electrolitos Séricos:(2005/06/30) Na 141.4 K:4.3 Cl: 113 Ca : 4.55
    (2005/08/01) Na 148.3 K:4.02 Cl: 120 Ca : 4.23
  • Examen Completo de Orina :
    leucocitos : 4-6 /c
    hematíes 0-1/c
    presencia de filamentos mucoides


Diagnóstico :

  1. Infección por VIH -1 C3 en TARGA2.
  2. Tuberculosis enteroperitoneal en tto esquema 2 fase 2
  3. Sarcoma de kaposi en quimioterapia
  4. Diarreas crónicas reagudizada por cocideos
  5. Anemia por Quimioterapia
  6. Deshidratación moderada


    Tratamiento

    1. Hidratación : dextrosa(con hipersodio , kalium ); cloruro de sodio 9/1000
    2. Cotrimoxazol F c/12hr VO por 17 días
    3. metronizadoz 500mg vo c/8 hr por 11 dias
    4. Dimenhidrinato 50mg EV c/8hr
    5. TARGA

2005/05 estabudina ,zidobudina ,.lamibudina
2005/08 nevirapina 400mg vo, zidobudina/lamibudina 600/300 mg vo a la fecha .

6. Boi K c/8hr vo 5 dias


Tablas



Gráficos
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Macroscopía : lesiones hiperqueratocicas hiperpigmetadas en el dorso de ambos pies y lesión macular eritemato violácea de 3 cm de diámetro en región plantar derecha

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Biopsia de piel :Proliferación de células endoteliales de forma
fusiforme e infiltración de células inflamatorias.diagnostico de SK.
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Radiografia de torax: Acentuación de trama hiliar y bronquial e intersticial
bilateral de densidad pulmonar conservada
Gráficos
CONCLUSIÓN:
El sarcoma de kaposi es un neoplasia multicéntrica formado por varios nódulos vasculares que se manifiestan en piel, mucosas y vísceras (1) ; su presentación clínica en pacientes con SIDA dependerá de la inmunidad del paciente. El reporte muestra a un paciente infectado por HIV -1 C3 según la clasificación dada por el CDC (2) , lo que representa el estadio SIDA con nivel de células CD4+ inferiores a 200/mm3 asociada a la infección de Tuberculosis entero peritoneal , tabla Nº 1-2.

El SK epidémico se presenta con mayor frecuencia en pacientes HSH VIH- 1 positivos representando el 34 % ; sin embargo , solo se evidencia en el 1 % de pacientes norteamericanos con Síndrome de Inmuno Deficiencia Adquirida (AIDS) , en ambos casos con tratamiento antirretroviral (ART).

El herpes virus 8 (HHV 8) esta profundamente implicado como factor vírico en la patogenia del SK (3), fundamentándose en la existencia de proteínas TAT que participa en la trascripción del VIH es un factor promotor del SK.

El SK afecta con mayor frecuencia a ganglios linfáticos e intestinos teniendo como presentación dérmica lesiones cutáneo plantares o nódulos de color violáceo como se evidencia en este reporte debemos recordar que se asemeja al SK clásico pero la forma de presentación es limitada. El diagnostico de SK se realizo a través de la biopsia de la lesión donde se encontró una proliferación de células endoteliales de forma fusiforme(4) (ver grafico ) así mismo se evidencia infiltración de células inflamatorias .

El recuento de linfocitos CD4 en la determinación del inicio de ART y en seguimiento del mismo son de importancia a considerar (8) observamos que luego del inicio ART en 8 meses, los valores CD4 se incrementan de <200>600/ mm3 , 4 meses antes del valor pico se inicio el tratamiento quimioterápico para el SK y el recuentos de CD4 se mantuvieron en ascenso .

La asociación de AIDS y TBC es de alta frecuencia siendo la pulmonar de mayor frecuencia, el reporte presenta una TBC entero peritoneal que inicio con un cuadro síndromico diarreico re agudizado el cual es muy frecuente en pacientes con AIDS a causa de infecciones Oportunistas como la Isospora belli encontrada en el examen de heces realizada en este paciente (5),

La infección TBC se presenta en forma simultanea a la caída del CD4 llevándolo a valores por debajo de los 250 /mm3 siendo así clasificado como VIH 1 C3 a su ingreso último .

Pese al tratamiento antituberculoso indicado (esquema II ) su evolución es desfavorable con una pendiente negativa en el recuento linfocito total y el de CD4 (ver gráfico) evidenciándose de esta forma que la asociación del tratamiento antituberculoso y retroviral no son sufrientes para mejor el cuadro clínico del paciente teniendo una inmunosupresión como fondo asociado a tratamiento quimioterápico para el SK.

En los exámenes por imágenes se busco lesión pulmonar basal por ser de mayor frecuencia en inmunosuprimidos(6) , en los pacientes con SIDA como lo ilustra el caso no se evidencia lesiones parenquimales debido a una mala respuesta inmunológica (7) por ello solo evidenciamos un patrón alveolar hilio basal izquierdo (ver gráfico) en relación a proceso inflamatorio parenquimal.

La presencia constante de un síndrome anémico normocítico para tornarse luego macrocítico y megaloblastico sugiere un interpretación de origen carencial por el síndrome diarreico crónico ; la HCM se incremento >32 pg a la par del VCM sugerente de una anemia perniciosa sin embargo los valores séricos de B12 y ácido fólico están dentro de lo normal en ausencia de reticulocitosis por lo tanto esta caida de la hemoglobina se explicaría por el tratamiento quimioterápico para SK pese al tratamiento vitamínico iniciado .
Bibliografia:
1) JA Avilés Izquierdo. C Recarte García-Andrade. M Huerta Brogeras. R Suárez Fernández. V Pardo Guimerá. P Lázaro Ochaíta. Sarcoma de Kaposi . Jano. 2004;66:30-6. [FULL TEXT]
2) Dr. Héctor Manuel Díaz Torres, Dra. Ana Luisa Lubián Caballero Hhv 8. Definición de caso y clasificación de la infección por VIH y SIDA. Rev Cubana Med 1998;37(3):157-65 [PDF]
3) Karen Antman, M.D., and Yuan Chang, M.D. Kaposi's Sarcoma. The New England Journal of Medicine. 2000: 342:1027(14):1027-2038 [pdf]
4) Daniel Podzamczer. José Ramón Arribas.Pulido.Tratamiento de las infecciones oportunistas en pacientes adultos y adolescentes infectados por el virus de la inmunodeficiencia humana en la era del tratamiento antirretrovírico de gran actividad. Enferm Infecc Microbiol Clin. 2001;19:376-92. [FULL TEXT]
5) E Cerrada Cerrada. JL Menéndez Gómez. J Olalla Linares. T Piñeiro Portillo. Tuberculosis y VIH.FMC. Form Med Contin Aten Prim. 2003;10:168-72. [Abstract]
6) Akpaka P, Tulloch-Reid M, Justiz-Vaillant A, Smikle M. Prevalence of human immunodeficiency virus infection in patients with pulmonary tuberculosis at the National Chest Hospital in Jamaica. Rev Panam Salud Publica. 2006;19(1):38-43 [Abstract]
7)Lynn S Zijenah, Gerard Kadzirange. Affordable flow cytometry for enumeration of absolute CD4+T-lymphocytes to identify subtype C HIV-1 infected adults requiring antiretroviral therapy (ART) and monitoring response to ART in a resource-limited setting. Journal of Translational Medicine 2006, 4:33-39. [MEDLINE]

Wednesday, November 01, 2006


PÚPURA TROMBOCITOPÉNICA PROBABLEMENTE INMUNE
UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS

HOSPITAL NACIONAL 2 DE MAYO
Caso: Varón de 23 Años de Edad con Petequias y Equímosis Múltiples en Piel y Mucosa

Alumnos: Mendoza Contreras, Doris; Maximiliano Nieva, Hugo

PRESENTACIÓN DEL CASO


Paciente N.C.C., HC: 1814502, varón de 23 años de edad procedente de Lima que hace 3 días máculas eritematosas en antebrazos, piernas, tobillos, pies y escasas en tórax anterior abdomen y región lumbar bilateral que incrementan de diámetro hasta 0,5cm aproximadamente.
Con esta sintomatología el día 29.10.06 acude a Clínica San Juan Bautista en San Juan de Lurigancho, donde indican que visite un especialista del Hospital Nacional Dos de Mayo para descartar una posible púrpura. Allí, se solicita un recuento de plaquetas, cuyo resultado es 10 000xmm3.
Al día siguiente (30.10.06) nota mancha eritémato-violácea en el lado izquierdo de la lengua que llega a medir 2cm de diámetro (Fig.5), que ocasiona dolor a la ingestión, por todo esto acude al servicio de Hematología de este nosocomio, donde indican su hospitalización.


FUNCIONES BIOLÓGICAS

Sin alteración.

ANTECEDENTES

PERSONALES

Generales
-Ocupaciones anteriores: construcción civil, gasfitería, en contacto con cementos y pegamentos, refiere que este último ocasiona esporádicamente tos, dolor de ”garganta”.

Fisiológicos:
-Nacido de parto eutócico.
-Desarrollo psicomotor normal.

Patológicos:
-A los 8 años Cólera, hospitalizado durante dos meses.
-Hace aproximadamente 1 año presenta cuadro similar de igual localización, también en amígdalas, de menor tamaño, acompañado de gingivorragia y cansancio, por lo que acude a farmacia donde le indican ampolla y 2 pastillas diarias por 7 días cuyo nombre no recuerda, con lo cual remiten las lesiones.

FAMILIARES
-madre: migraña.
-hermana (21 años): alergia al polvo.
-hermana (18 años): masa tumoral en seno.

EXAMEN FISICO:


Funciones Vitales:
* PA: 110/70 mmHg
* F de pulso:90 x min.
* FR: 20 x min
* Temperatura: 36.5 ºC

Paciente en buen estado general, en buen estado de hidratación y buen estado de nutrición. Piel tibia, consistente, presenta máculas y pápulas eritematovioláceas de 1-5mm de diámetro en lado izquierdo de cuello (Fig.1), tórax anterior, piernas (Fig. 3 y 4), pies, escasas en región dorso lumbar y cuero cabelludo, que no desaparecen a la vitropresión. Equímosis en labio superior de 5mm de diámetro. Mucosas hidratadas, no pálidas, lesión úlcero-costrosa sobre equímosis de 2cm de diámetro en borde izquierdo de lengua. Uñas: palidez , cianosis distal leve, onicodistrofia en primer ortejo izquierdo, llenado capilar <2seg.

Tejido celular subcutáneo conservado. Sistema linfático sin alteraciones. Aparato locomotor sin alteraciones. Sistema osteoarticular sin alteraciones.Aparato Respiratorio y Cardiovascular sin alteraciones.

Abdomen:
Simétrico, móvil con la respiración; ruidos hidroaéreos presentes, no dolor a la palpación superficial y profunda, se palpa hígado a 2 cm DRCD, bazo no se palpa, ni se percute.
Sistema génito-urinario, neurológico sin alteraciones

Sistema vascular periférico:
Pulsos periféricos de intensidad incrementada, simétricos, vasos colapsables.

DIAGNÓSTICO CLÍNICO

Síndrome hemorrágico.

Fig.1: Petequias en lado derecho de cuello (31.10.06)


Fig.2: Petequias en pierna y pie izquierdo (31.10.06)



Fig.3: Petequias en región pretibial izquierda (31.10.06)


Fig.4: Petequias en región precordial, luego de

punción para aspirado medular (31.10.06)



Fig.5: Equímosis en labio superior, lesión úlcera costrosa sobre

equímosis en borde izquierdo de lengua (31.110.06)


EXÁMENES AUXILIARES









Aspirado de Médula Ósea: 30.10.06

Conclusión:
1. Ausencia de hemosiderina
2. Hiperplasia megacariocítica

3. Incremento del tejido adiposo

Fig. 6: Megacariocitos en Aspirado Medular (31.10.06)


TRATAMIENTO

30.10.06

Dexametasona 8 mg 1 amp EV c/8h
Ranitidina 50 mg EV c/8h
No Intramusculares

Luego de tres días, la dexametasona fue sustituida: por Prednisona 75 mg VO c/24h y la ranitidina a 30 mg VO a 8:00pm.
El paciente fue dado de alta el 04.11.06, con las indicaciones señaladas.


DISCUSIÓN
El síndrome hemorrágico puede deberse a trastornos vasculares, plaquetarios o de la coagulación. La objetivación de una lesión de morfología máculo-pápular, de color rojizo que no desaparece a la vitropresión, nos conlleva a la observación de la morfología de la lesión, si la lesión es macular, púrpura no palpable orientará a etiología no vascular; si la lesión es papular, púrpura palpable, la patología vascular: por tanto nuestras lesiones no se encuadran en este algoritmo.
El síndrome purpúrico comprende el grupo de enfermedades en las que se producen pequeñas hemorragias de las capas superficiales de la piel o mucosas dando una coloración purpúrea, (falla de la hemostasia primaria). La trombocitopenia que se presenta limita nuestro panorama a tres posibles causas, entre ellas: producción defectuosa, aumento de la destrucción y secuestro plaquetario. Una producción defectuosa se asocia a plaquetas de reducido tamaño, las cuales no se observan en los hemogramas; por otro lado en el secuestro plaquetario se evidencia hiperesplenismo, que no ha sido hallazgo del examen físico, por tanto correspondería a un incremento de la destrucción plaquetaria.
El abordaje debe orientarse a dos objetivos: apreciar el riesgo hemorrágico e investigar la causa con la ayuda de un mielograma, después de haber eliminado otras causas evidentes. Este último permite determinar el origen central o periférico de la trombopenia, en este caso se trata del tipo periférico.
Dentro de las púrpuras trombocitopénicas tenemos las de tipo no inmune e inmune. En el primer caso se tiene por ejemplo al síndrome urémico-hemolítico, púrpura trombótica trombocitopénica, hemangiomas, circulación turbulenta, CID, fármacos, entre otras, donde nuestra historia clínica y exámenes auxiliares alejan la posibilidad de alteración neurológica, una anemia hemolítica, insuficiencia renal aguda, entre otros que podrían presentarse en estos casos.

El diagnóstico de una
púrpura trombocitopénica inmune se hace por exclusión de formas secundarias, p.e. las asociadas a Lupus eritematoso sistémico, síndrome antifosfolipidico, estados de inmunodeficiencia, desórdenes linfoproliferativos, infección con el virus de inmunodeficiencia humana y el virus de la Hepatitis C, y terapia con drogas como la heparina y quinidina. Es importante tener en cuenta que una trombocitopenia hereditaria puede ser enmascarada como púrpura trombocitopénica inmune. La ausencia de antecedentes familiares, síntomas sistémicos, examen clínico y pruebas de laboratorio nos ayuda a excluir estas formas secundarias.

Es necesario 5 criterios diagnósticos: I) trombocitopenia en por lo menos dos recuentos en días diferentes II) exclusión de otras enfermedades III) hiperplasia megacariocítica IV) presencia de anticuerpos antiplaquetarios y V) respuesta al tratamiento autoinmune. Se presenta dos hemogramas en que se observa plaquetopenia (Tab 1), se excluyeron varias patologías mediante historia clínica y examenes de laboratorio, se evididencia la hiperplasia megacariocítica en el aspirado de médula ósea y por último se obtiene respuesta al tratamiento inmune con una variación de 1 000 a 54 000xmm3; se cumple con cuatro de cinco criterios, por lo tanto existe una alta probabilidad de tratarse de una Púrpura Trombocitopénica Inmune de presentación en adultos.
El recuento plaquetario inicial es 1 000xmm3 , la literatura refiere que un recuento de plaquetas inferiores a 20.000 conlleva a mayor riesgo de hemorragias internas y sangrado del sistema nervioso central, hallazgo que clínicamente no se evidenció, debido probablemente a que no hubo persistencia de esta magnitud de trombocitopenia.

El tratamiento que recibió fue inicialmente Dexametasona 8 mg EV c/8h por 3 días y luego fue sustituida por Prednisona 75 mg VO c/24 horas. Esta última permite que 2/3 de los pacientes eleven sus recuentos plaquetarios por encima de 50 000/uL. Los esteroides mejoran el adelgazamiento del endotelio vascular y eliminan la púrpura antes que se eleven las plaquetas. Pero también es importante tener presente efectos adversos sobre la mucosa gástrica, por ello la indicación de un inhibidor de los receptores H2 de la histmanina. La evaluación a los cinco días de tratamiento fue favorable, se evidenció una variación de 1 000 a 54 000Xmm3, se cumplió con los cuidados especiales durante el internamiento como la no colocación de inyecciones intramusculares o accesos venosos centrales.
El paciente fue dado de alta en 04.11.06 con la medicación indicada.

REFERENCIAS
Covarrubias R, Sotelo N, Hurtado J. Púrpura trombocitopénica autoinmune.Bol Med Hosp Infant Mex 2004; 61(2) : 119-127.

Zimmer J, Andrés E, Noel E, Koumarianou A. Current management of adult idiopathic thrombocytopenic purpura in practice: a cohort study of 201 patients from a single center. Clin. Lab. Haem. 2004, 26, 137–142.

Douglas C, Blanchette V, Chir B. Immune thrombocypenic purpura. N ENGL J MED, Vol. 346, No. 13 March 28, 2002.
Cheng Y, Wong R, Soo Y, Chung Hin Chui, Fung Yi Lau, Chan N, Wai Shan Wong and Cheng G. Initial treatment of immune thrombocytopenic purpura with high-dose dexamethasone. N ENGL J MED 349;9 August 28, 2003.
Bah M, Houery M. Actuación ante las anomalías cuantitativas y cualitativas de las plaquetas. Acta Bioquím. Clín. Latinoam. v.39 n.3 La Plata jun./sept. 2005.

Madero L, Molina J, Sevilla J. Púrpura Trombocitopénica Idiopática. Controversias.
BSCP Can Ped 2001; 25- nº 2.

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